4月24日凌晨，国际顶尖学术期刊《Science》以研究长文（Research Article）形式，在线发表国家蛋白质科学研究（上海）设施用户上海科技大学免疫化学研究所饶子和院士研究团队与合作者的题为“Structures of cell wall arabinosyltransferases with the anti-tuberculosis drug ethambutol”的研究论文。该项工作在国际上首次成功解析了分枝杆菌关键的阿拉伯糖基转移酶复合体EmbA-EmbB和EmbC-EmbC的“药靶-药物”三维结构，首次揭示了一线抗结核药物乙胺丁醇作用于该靶点的精确分子机制，为解决结核病耐药问题，研发新型抗结核药物奠定了重要基础。
结核病是全球十大致死疾病之一，是单一传染病中的“头号杀手”（排名超过艾滋病和疟疾）。据世界卫生组织报告，全世界约四分之一人口潜伏感染结核病。目前，治疗结核病的一线药物均为上世纪40-60年代开发，使用已长达半个多世纪。耐药性问题随之产生并且日趋严重，甚至无药医治，给结核病防治和公共卫生安全带来了前所未有的压力。因此，针对抗结核药物靶点的研究以及新药的研发迫在眉睫。
结核分枝杆菌是引起结核病的病原菌，其细胞壁极为特殊，主要成分包括分枝菌酸（MA）、阿拉伯半乳聚糖（AG）、肽聚糖（PG）和脂阿拉伯聚糖（LAM）等，对结核菌起到天然保护作用。抑制细胞壁成分的合成被认为是合理的抗结核新药研发思路。当前使用的一线抗结核药物异烟肼、乙胺丁醇等均是通过抑制细胞壁合成发挥作用的。研究表明，乙胺丁醇靶向参与AG和LAM合成的阿拉伯糖基转移酶EmbA，EmbB和EmbC。但是自该药物问世以来，其分子机制一直未被解开，也就无法对乙胺丁醇这一“传统老药”进行更新换代，以解决其日益严重的耐药性问题。
饶子和院士团队长期以来致力于针对结核病重要靶点的研究及新药开发。此前，曾先后解析了临床药物Q203靶点——呼吸链超级复合体CIII2CIV2SOD2结构（2018年《Science》），临床药物SQ109靶点——MmpL3的多个“靶点-药物”复合物结构（2019年《Cell》）。今年，研究团队再获重大突破，解析了一线药物乙胺丁醇靶点——EmbA-EmbB和EmbC-EmbC两种复合物的三维结构，揭示了乙胺丁醇作用于靶点的精确分子机制。该项成果的取得历经6年漫长的时光，研究团队不畏艰难，相继克服了蛋白样品不表达、晶体衍射分辨率差、相位解析困难、底物难以合成、活性检测体系缺失等诸多难题，最终利用X射线晶体学技术和冷冻电镜三维重构技术，成功解析了EmbA-EmbB，EmbC-EmbC分别与底物（Ara2，DPA）和药物乙胺丁醇（EMB）复合物的结构，破解了困扰研究人员长达半个多世纪的抗结核药物机制难题。
（A）结核分枝杆菌（Mtb）和耻垢分枝杆菌（Msm）EmbA-EmbB-AcpM2和EmbC2-AcpM2与底物（Ara2，DPA）和药物（EMB）复合物结构；（B）以MtbEmbB为代表展示Emb蛋白结构特征；（C）Emb蛋白拓扑结构示意图
结构研究表明，EmbA和EmbB以异源二体形式，而EmbC则以同源二体形式发挥生理功能。一个令人意外的发现是，参与细胞壁MA合成的AcpM蛋白结合于每个Emb蛋白的胞内侧，分别形成EmbA-EmbB-AcpM2和EmbC2-AcpM2复合体。每个Emb蛋白结构均可划分为一个15次跨膜结构域和两个含有jelly-roll折叠形式的胞外结构域，活性口袋则位于跨膜结构域和胞外结构域之间。研究分析了阿拉伯糖供体（DPA）和二糖（Ara2）在活性位点的精确结合方式。进一步研究发现，乙胺丁醇同样结合于EmbB和EmbC的活性口袋，其结合位点分别占据了催化氨基酸Asp两侧的底物结合位置（D-site和A0-site），从而同时阻断了阿拉伯糖供体和受体的结合，最终抑制了细胞壁AG和LAM的合成。通过分析乙胺丁醇临床耐药突变位点，团队成员发现大部分位点均位于EmbB和EmbC的药物结合位置附近。相关位点氨基酸的突变可直接或者间接影响到乙胺丁醇的结合。因此，对于解决耐药性问题，需要在新药设计时考虑到避免这些位点的空间影响。以上研究成果将为乙胺丁醇的优化和靶向Emb蛋白的新药开发奠定坚实的结构理论基础。
（A）乙胺丁醇在靶点蛋白活性位点的结合方式；（B）乙胺丁醇结合位点的相互作用示意图；（C）结构叠合显示乙胺丁醇占据底物阿拉伯糖的结合位点（D-site和A0-site）；（D）结构叠合显示乙胺丁醇占据供体DPA的阿拉伯糖结合位点(D-site)；（E）对应于(D)的局部放大图
本项工作的完成标志着饶子和团队通过多年努力，基本攻克了结核病关键药靶领域已知仅剩的几大战略高地。目前，研究团队正充分利用上海科技大学和张江生物医药产业基地的优势，通过全面合作，全力推动抗结核新药的研发，加快基础研究成果的转化。
本项目得到了国家蛋白质科学研究（上海）设施质谱系统的彭超博士及其团队成员在质谱分析和相关数据解析等方面的技术支持；规模化蛋白制备系统在分子相互作用的测定上提供了设备和技术支持；蛋白质微晶体结构线站BL18U、蛋白质复合物晶体结构线站BL19U1对其晶体衍射与数据收集处理提供了技术支持。
文章链接：https://science.sciencemag.org/content/early/2020/04/22/science.aba9102
